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谷胱甘肽還原酶(GR)活性測定試劑盒說明書

發布時間:2023/10/13      點擊次數:261

谷胱甘肽還原酶GR活性測定試劑盒說明書

                                               微量法100T/96S

 

    意:正式測定之前選擇2-3個預期差異大的樣本做預測定。

測定意義:

GR是廣泛存在于真核和原核生物中的一種黃素蛋白氧化還原酶,是谷胱甘肽氧化還原循環的關鍵酶之一(通常昆蟲中GRTrxR取代)。GR催化NADPH還原GSSG生成GSH,有助于維持體內GSH/GSSG比值。GR在氧化脅迫反應中對活性氧清除起關鍵作用,此外GR還參與抗壞血酸-谷胱甘肽循環途徑。

 

測定原理:

GR能催化NADPH還原GSSG再生GSH,同時NADPH脫氫生成NADP+;NADPH340 nm有特征吸收峰,相反NADP+在該波長無吸收峰;通過測定340 nm吸光度下降速率來測定NADPH脫氫速率,從而計算GR活性。

 

自備儀器和用品:

低溫離心機、水浴鍋、移液器、紫外分光光度計/酶標儀、微量石英比色皿/96孔板、和蒸餾水

 

試劑組成和配置:

試劑一:液體120mL×1瓶,4保存。

試劑二:粉劑×2支,-20保存。臨用前加入1.2mL蒸餾水,混勻。

試劑三:粉劑×2-20保存。臨用前加入0.6mL蒸餾水,混勻。

 

粗酶液提取:

1.        組織:按照組織質量(g:試劑一體(mL)15~10的比例(建議稱取約0.1g組織,加入1mL試劑一)進行冰浴勻漿。8000g,4離心15min,取上清,置冰上待測。

 

2.        細菌、真菌:按照細胞數量(104個):試劑一體積(mL)為500~10001的比例(建議500萬細胞加入1mL試劑一),冰浴超聲波破碎細胞(功率300w,超聲3秒,間隔7秒,總時間3min);然后8000g4,離心15min,取上清置于冰上待測。

 

3.        血清等液體:直接測定。

 

操作步驟:

1. 分光光度計/酶標儀預熱30 min,調節波長到340 nm,蒸餾水調零。

2. 試劑一置于25℃(普通物質)或者37℃(哺乳動物)中預熱30min

3. 測定管:取微量石英比色皿或96孔板,依次加入10μL試劑三,20μL試劑二,150μL試劑一,20μL上清液,混勻,340nm迅速測定初始吸光度和180 s吸光度,記為A1A2A測定管= A1A2。

 

意:

 

1.加完上清液后必須迅速混勻測定,保證準確測出初始反應速度;

2.當出現初始180s內吸光值不穩定時,可以適當延長反應時間,選取相對穩定的時間段內吸光值變化值;

3.當所測△A測定管的值在零點附近徘徊時,可能原因:(1)樣本GR酶活性低,建議濃縮樣本后再進行測定;(2)樣本GR酶活性過高,吸光值變化區間過小無法準確測出,建議樣本稀釋2~5倍后再進行測定)

 

計算公式:

a.使用微量石英比色皿測定的計算公式如下

(1). 按蛋白濃度計算

活性單位定義:在一定溫度中,pH8.0條件下,每毫克蛋白每分鐘催化1nmol NADPH氧化1個酶活單位

GR酶活(nmol/min/mg prot)= [ A測定管÷ε÷d×V反總×109]÷[Cpr×V]÷T

= 536×A測定管÷Cpr

(2). 按樣本質量計算

活性單位定義:在一定溫度中,pH8.0條件下,每克樣本每分鐘催化1nmol NADPH氧化1個酶活單位。

GR酶活(nmol/min/g 鮮重)= [ A測定管÷ε÷d×V反總×109] ÷(W×V÷V樣總)÷T

= 536×A測定管÷W

(3) 按細胞數量計算

活性單位定義:在一定溫度中,pH8.0條件下,每104個細胞每分鐘催化1nmol NADPH氧化1個酶活單位。

GR酶活(nmol/min/104 cell)= [ A測定管÷ε÷d×V反總×109] ÷(細胞數量×V÷V樣總)÷T           

= 536×A測定管÷細胞數量

4)按液體體積計算

活性單位定義:在一定溫度中,pH8.0條件下,每毫升液體每分鐘催化1nmol NADPH氧化1個酶活單位。

GR酶活(nmol/min/mL)= [ A測定管÷ε÷d×V反總×109]÷×V÷T

= 536×A測定管

εNADPH摩爾消光系數6.22×103L/mol/cmd:比色皿光徑,1 cmV反總:反應體系總體積,200μL=2×10-4 L;1061 mol=1×106μmol; Cpr:上清液蛋白濃度(mg/mL);W :樣品質量;V樣:加入反應體系中上清液體積,20μL =2×10-2 mL;V樣總:提取液體積,1 mL;V樣總:提取液體積,1 mL;T:反應時間,3 min。

 

b.使用96孔板測定的計算公式如下

(1). 按蛋白濃度計算

活性單位定義:在一定溫度中,pH8.0條件下,每毫克蛋白每分鐘催化1nmol NADPH氧化1個酶活單位

GR酶活(nmol/min/mg prot)= [ A測定管÷ε÷d×V反總×109]÷[Cpr×V]÷T

= 1072×A測定管÷Cpr

(2). 按樣本質量計算

活性單位定義:在一定溫度中,pH8.0條件下,每克樣本每分鐘催化1nmol NADPH氧化1個酶活單位。

GR酶活(nmol/min/g 鮮重)= [ A測定管÷ε÷d×V反總×109] ÷(W×V÷V樣總)÷T

= 1072×A測定管÷W

(3) 按細胞數量計算

活性單位定義:在一定溫度中,pH8.0條件下,每104個細胞每分鐘催化1nmol NADPH氧化1個酶活單位。

GR酶活(nmol/min/104 cell)= [ A測定管÷ε÷d×V反總×109] ÷(細胞數量×V÷V樣總)÷T           

=1072×A測定管÷細胞數量

4)按液體體積計算

活性單位定義:在一定溫度中,pH8.0條件下,每毫升液體每分鐘催化1nmol NADPH氧化1個酶活單位。

GR酶活(nmol/min/mL)= [ (A測定管-A空白管)÷ε÷d×V反總×109]÷×V÷T

=1072×A測定管

εNADPH摩爾消光系數6.22×103L/mol/cm;d96孔板光徑,0.5 cmV反總:反應體系總體積,200μL=2×10-4

 

L;1061 mol=1×106μmol; Cpr上清液蛋白濃度(mg/mL);W :樣品質量;V樣:加入反應體系中上清液體積,20μL =2×10-2 mL;V樣總:提取液體積,1 mL;V樣總:提取液體積,1 mLT:反應時間,3 min。

 

注意事項:

1)樣品處理等過程均需要在冰上進行,且須在當日測定酶活力,勻漿液避免反復凍融;

2)試劑二和試劑三須現配現用,配制完后,置于冰上,未使用完的4℃保存,三天內使用完。

3測定前須先用12個樣做預實驗,哺乳動物組織一般須用試劑一稀釋25倍。

4)細胞中GR活性測定時,細胞數目須在300-500萬之間,細胞中GR的提取時可加試劑一后研磨或超聲波處理,不能用細胞裂解液處理細胞。


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